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          成纖維細胞的分離技術

          發布日期: 2013-08-05
          瀏覽人氣: 1394

           實驗步驟

          選擇大約一半足孕時間的胚胎好,10-13天齡胚胎含有大數量的未分化的間質細胞,成纖維細胞可從這些細胞衍生獲得。
          1. 胚胎的分離
             1) 適用哺乳動物(倉鼠、小鼠和大鼠)
          a.采用認可的方案處死嚙齒動物
          b. 立即在無菌超凈臺內用70%乙醇擦洗整個動物。若可能,置紫外燈下照射5min
          c. 用無菌的鑷子和剪子在前腿下作一腹部水平切口,用無菌鑷子將皮膚扯向后退。
           d. 用另一無菌的剪刀和鑷子切開腹部,去除含有胚胎的子宮,置于無菌的培養皿上
          e. 剔除胚胎周圍的包膜,將胚胎放于無菌的含有無菌PBS的燒瓶中。
           f. 漂洗胚胎,去掉PBS。繼續用PBS漂洗胚胎直清洗液清亮為止。
             2) 適用雞胚胎
           a. 70%乙醇擦洗雞蛋殼。
           b. 用無菌剪刀輕敲雞蛋的圓端,輕輕去除蛋殼露出氣囊。
           c. 用無菌鑷子去除覆蓋于絨毛尿囊上的白膜。
           d. 剪開包膜,用彎鑷夾住胚胎頸部去除胚胎。
          e. 棄頭部,將無頭的胚胎置于廣口燒杯中,用PBS漂洗。
          2. 6-8個胚胎轉移一個小的無菌廣口燒杯中,用新的無菌剪刀小心地絞碎胚胎,用PBS漂洗。
          3. 在無菌狀態下,將絞碎的胚胎轉移于一500ml的無菌的有攪拌棒的燒杯中,加入200-300mlHBSS配制的0.25%的無菌胰蛋白酶。
          4. 在溫暖的環境中或置于37培養箱中輕輕攪動15min
          5. 讓存留的組織塊在重力作用下慢慢沉降,將含有懸浮細胞的液體轉移一無菌大容積的離心管中,該管內按照每10ml上清加入1ml牛血清的比例加入牛血清以滅火胰蛋白酶。
          6. 加入新鮮胰蛋白酶溶液(見前述步驟)于含有殘留未消化組織塊的500ml燒杯中,重復步驟45
          7. 離心混合的細胞懸液,1200r/min5min,棄上清。
          8. 用新鮮的無菌PBS重懸沉淀的細胞,按步驟7再次離心。
          9. PBS反復洗滌細胞直上清清亮為止。
          10. 用含有10%牛血清和抗生素(如青霉素、鏈霉素)的DMEM 10ml再懸沉淀,并使終體積為100ml
          11. 讓殘留的大塊未破碎的組織或特殊顆粒物質沉降。可采用數層無菌紗布過濾細胞懸液以去除任何殘留的細胞快。
          12. 為確定現有細胞濃度,加入0.2ml細胞懸液于1.8ml 1%醋酸溶液中以裂解紅細胞,用血細胞計數器進行細胞計數。
          13. 按每10mm平皿1*1074*107細胞的數量接種于10ml組織培養液中,在飽和濕度的37 CO2培養箱中孵育直細胞鋪滿。
          14當細胞長滿后,去除培養液,用10%的溫暖的Versene(用PBS配制的0.53nmol/L EDTA),洗滌細胞層2次。
          15. Versene,加入相同體積的溫暖0.05%胰蛋白酶-EDTA
          16. 37孵育5min
          17. 用無菌吸管輕輕吹散細胞,并轉移一含有1-2ml牛血清的無菌管中。牛血清的終濃度約為10%,起到中和胰蛋白酶的作用。
          18. 離心,1200r/min5min,棄上清。
          19. 再懸沉淀于5ml培養液中,另加入15ml培養液,分裝于2100mm平皿中。
          20. 37飽和濕度的CO2培養箱中培養細胞,直細胞長滿,繼續步驟14-20以傳代細胞。
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